植物DNA提取

原理是一致的。方法不同。
1植物组织提取基因组DNA
一、材料
幼嫩叶子。
二、设备
移液器，冷冻高速离心机，台式高速离心机，水浴锅，陶瓷研钵，50ml离心管（有盖）及5ml和1.5ml离心管，弯成钩状的小玻棒。
三、试剂
1、提取缓冲液Ⅰ：100mmol/L Tris·Cl， pH8.0， 20mmol/L EDTA， 500mmol/L NaCl， 1.5% SDS。
2、提取缓冲液Ⅱ：18.6g葡萄糖，6.9g二乙基二硫代碳酸钠，6.0gPVP，240ul巯基乙醇，加水至300ml。
3、80:4:16/氯仿:戊醇:乙醇
4、 RnaseA母液
5、其它试剂：液氮、异丙醇、TE缓冲液，无水乙醇、70%乙醇、3mol/L NaAc。
四、操作步骤：
1. 在50ml离心管中加入20ml提取缓冲液Ⅰ， 60℃水浴预热。
2. 幼苗或叶子5-10g， 剪碎， 在研钵中加液氮磨成粉状后立即倒入预热的离心管中， 剧烈摇动混匀， 60℃水浴保温30-60分钟(时间长，DNA产量高)， 不时摇动。
3. 加入20ml氯仿/戊醇/乙醇溶液， 颠倒混匀(需带手套， 防止损伤皮肤)，室温下静置5-10分钟， 使水相和有机相分层(必要时可重新混匀)。
4. 室温下5000rpm离心5分钟。
5. 仔细移取上清液至另一50ml离心管，加入1倍体积异丙醇，混匀，室温放置片刻即出现絮状DNA沉淀。
6. 在1.5ml eppendorf中加入1ml TE。用钩状玻璃棒捞出DNA絮团，在干净吸水纸上吸干，转入含TE的离心管中，DNA很快溶解于TE。
7. 如DNA不形成絮状沉淀，则可用5000rpm离心5分钟， 再将沉淀移入TE管中。这样收集的沉淀，往往难溶解于TE，可在60℃水浴放置15分钟以上，以帮助溶解。
8. 将DNA溶液3000rpm离心5分钟， 上清液倒入干净的5ml离心管。
9. 加入5μl RNaseA(10μg/μl)， 37℃ 10分钟， 除去RNA(RNA对DNA的操作、分析一般无影响，可省略该步骤）。
10. 加入1/10体积的3mol/L NaAc及2×体积的冰乙醇，混匀，-20℃放置20分钟左右，DNA形成絮状沉淀。
11. 用玻棒捞出DNA沉淀，70%乙醇漂洗，再在干净吸水纸上吸干。
12. 将DNA重溶解于1ml TE， -20贮存。
13. 取2μl DNA样品在0.7% Agarose胶上电泳， 检测DNA的分子大小。同时取15μl稀释20倍， 测定OD260/OD280， 检测DNA含量及质量。
[注意] 5g样品可保证获得500μg DNA， 足供RFLP、PCR等分析之用。

原理是一致的，区别就在于Z初的取材
如：植物细胞一般用液氮破裂，动物细胞多用匀浆的办法

原理是一致的，区别就在于Z初的取材
植物细胞一般用液氮破裂或纤维素水解酶，动物细胞多用匀浆的办法