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大鼠流行性出血热IgG抗体ELISA试剂盒(定性)说明书

对比测试
l试剂盒用于体外定性检测血清、血浆、组织匀浆及相关液体样本中大鼠流行性出血热IgG抗体(EHF-IgG)。

l有效期:6个月

l保存条件:2-8℃

实验原理

试剂盒采用间接法酶联免疫吸附试验(ELISA)。由于抗体产生量一般比较大,为避免HOOK效应,试剂盒采用两步法。往预先包被大鼠流行性出血热IgG抗体(EHF-IgG)捕获抗原的包被微孔中,依次加入标本、阴性和阳性对照,经过温育并彻底洗涤,再加入HRP标记的检测抗体,经过温育并彻底洗涤。用底物TMB显色,TMB在过氧化物酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成Z终的黄色。颜色的深浅和样品中的大鼠流行性出血热IgG抗体(EHF-IgG)呈正相关。用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),判定阴阳性。

样本处理及要求

1.血清:将收集于血清分离管的全血标本在室温放置2小时或4℃过夜,然后1000×g离心20分钟,取上清即可,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
2.血浆:用EDTA或肝素作为抗凝剂采集标本,并将标本在采集后的30分钟内于2-8℃1000×g离心15分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
3.组织匀浆:用预冷的PBS(0.01M,pH=7.4)冲洗组织,去除残留血液(匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果),称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS(一般按1:9的重量体积比,比如1g的组织样品对应9mL的PBS,具体体积可根据实验需要适当调整,并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶YZ剂)加入玻璃匀浆器中,于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞,可以对匀浆液进行超声破碎,或反复冻融。Z后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟,取上清检测。

4.细胞培养物上清或其它生物标本:请1000×g离心20分钟,取上清即可检测,或将上清置于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。

注:标本溶血会影响Z后检测结果,因此溶血标本不宜进行此项检测。

需要而未提供的试剂和器材

酶标仪(450nm)高精度加样器及枪头:0.5-10uL、2-20uL、20-200uL、200-1000uL37℃恒温箱蒸馏水或去离子水

试剂盒组成

名称

96孔配置

48孔配置

备注

微孔酶标板

96孔

48孔

阴性对照

0.3mL

0.3mL

阳性对照

0.3mL

0.3mL

样本稀释液

6mL

3mL

检测抗体-HRP

10mL

5mL

20×洗涤缓冲液

25mL

15mL

按说明书进行稀释

底物A

6mL

3mL

底物B

6mL

3mL

终止液

6mL

3mL

封板膜

2张

2张

说明书

1份

1份

自封袋

1个

1个

注意事项

严格按照规定的时间和温度进行温育以保证准确结果。所有试剂都必须在使用前达到室温20-25℃。使用后立即冷藏保存试剂。洗板不正确可以导致不准确的结果。在加入底物前确保尽量吸干孔内液体。温育过程中不要让微孔干燥掉。消除板底残留的液体和手指印,否则影响OD值。底物显色液应呈无色或很浅的颜色,已经变蓝的底物液不能使用。避免试剂和标本的交叉污染以免造成错误结果。在储存和温育时避免强光直接照射。平衡至室温后再打开密封袋以防水滴凝聚在冷板条上。任何反应试剂不能接触漂白溶剂或漂白溶剂所散发的强烈气体。任何漂白成分都会破坏试剂盒中反应试剂的生物活性。不能使用过期产品。如果可能传播疾病,所有的样品都应管理好,按照规定的程序处理样品和检测装置。

试剂准备

试剂盒从冷藏环境中取出应在室温平衡后方可使用。

20×洗涤缓冲液的稀释:蒸馏水按1:20稀释,即1份20×洗涤缓冲液加19份蒸馏水。

操作步骤

从室温平衡20min后的铝箔袋中取出所需板条,剩余板条用自封袋密封放回4℃。设置阴性对照孔、阳性对照孔和样本孔,阴性、阳新对照孔各加50μL对照品,样本孔中加入待测样本50μL,空白孔不加。用封板膜封住反应孔,37℃水浴锅或恒温箱温育30min。弃去液体,吸水纸上拍干,每孔加满洗涤液(350μL),静置1min,甩去洗涤液,吸水纸上拍干,如此重复洗板5次(也可用洗板机洗板)。除空白孔外,标准品孔和样本孔中每孔加入辣根过氧化物酶(HRP)标记的检测抗体100μL,用封板膜封住反应孔,37℃水浴锅或恒温箱温育30min。弃去液体,吸水纸上拍干,每孔加满洗涤液(350μL),静置1min,甩去洗涤液,吸水纸上拍干,如此重复洗板5次(也可用洗板机洗板)。每孔加入底物A、B各50μL,37℃避光孵育15min。每孔加入终止液50μL,15min内,在450nm波长处测定各孔的OD值。

实验结果计算

1.阴性对照OD值:小于0.2。

2.阳性对照OD值:大于0.8。

3、阳性判断(Cut-Off值):阴性对照OD值+0.25,样本OD值大于阈值,判定为阳性,反之,为阴性。


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2005-01-29
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