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产品品牌:
测序实验流程:
实验方法原理
SD胎鼠脑皮层神经元体外培养7d,微量移液器塑料滴头于培养孔内机械性划割培养之神经元,依划割程度不同分为轻、中、重3组,对照组除不进行机械性划割,其余处理同损伤组,伤后不同时间点(10,30min,1,3,6,12,24h)检测细胞存活率及培养液上清乳酸脱氢酶(LDH)含量。
实验材料SD大鼠
试剂、试剂盒硼酸硼砂缓冲液胰酶-EDTA消化液D-Hanks’
仪器、耗材眼科剪滴管离心机培养皿CO2培养箱
实验步骤
1.孕16dSD大鼠经钠麻醉后,碘酒、75%乙醇消毒腹部皮肤,依次剪开皮肤、肌肉、皮下筋膜,无菌操作下取出胚胎放入预冷的D-Hanks’平衡盐液中。
2.在解剖显微镜下分离并取出胚胎大脑皮层,除去脑膜,剪碎组织成约1mm3大小,加入胰酶-EDTA消化液并放入37℃孵箱内消化20min,中间摇晃一次。
3.随后用滴管吸出组织转移到装有预冷的培养液(DMEM+10%FBS)的离心管内终止消化液作用5min。
4.用滴管吸出组织转移到装有预冷的DMEM+10%FBS的离心管内,用火焰抛光的巴斯德滴管吹打数次,静置后取上清吸到另一支离心管内。重复上述步骤2~3次。
5.将所收集的上清经200目筛网过滤。
6.过滤后的细胞悬液于800rpm离心5min,弃上清,管内加入新鲜培养液(DMEM+20%FBS)并吹打成单细胞悬液。
7.细胞计数,调整细胞密度按1.5×105/cm2种入6孔板内,放入CO2孵箱中培养。培养48h后换液并加入Ara-C使其终浓度为1×10-5mM/L。Ara-C作用24h后全量换液。以后每隔3天半量换液一次。
注意事项
1.上面的步骤是传统方法。有许多地方可以进行改动:如消化时可以直接用0.125-0.25%的胰酶消化15-20min左右,也可用DNA酶进行消化,有人还直接进行吹打,都可行。
2.上面虽然时大鼠皮层神经元,但是同样适用于小鼠,但是应该选择孕13d左右的小鼠。
3.神经元是一种比较难培养的细胞,因此在接种时细胞的密度一定要够。
4.在玻片上培养神经元时,一定要注意玻片的来源和处理方法,这个非常重要,对神经细胞的影响是很大的。如果您现在在玻片上培养的神经元生长情况还不错的话,那么您在以后的培养中Z好还是用同一来源(厂家)的玻片。
5.如果有B27和neurobasal培养基,那么就方便了(不用加AraC):
(1)把细胞悬液用(DMEM+20%FBS)悬浮,种到培养皿上6-12h后,全量换成2%B27的neurobasal培养基,继续培养,3d半量换液。
(2)把细胞悬液用直接用2%B27的neurobasal培养基悬浮接种。
(3)可以用新生1d内的胎鼠皮层直接培养。
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