AlgaeTron AG藻类生长室

AlgaeTron藻类生长室

AlgaeTron藻类生长室是一种可以进行藻类和蓝细菌精确培养的立柜式振荡生长室。配备有藻类培养振荡器。在显示屏上可以显示设定的各种光强、温度等环境参数和实际值。通过电脑中的专用程序，用户可对光强，光质，温度和震荡强度等进行时间设置，并可模拟昼夜变化等自然培养条件。

AlgaeTron藻类生长室结构紧凑，立地面积小，可以大大节省宝贵的实验室空间，分为AG130和AG230两个型号。

应用领域：

l精确藻类或细菌培养

l环境因子胁迫研究

l同质化培养筛选品种

l转基因藻类性状研究

l藻类对气候变化的响应及其机制

仪器特点：

l程序独立控制的LED光源：

- 白光+远红光LED（标准配置）

- 用户自定义照明调整模式（连续光照、脉冲光照、正弦光照、三角光照）

- 1 % 到100 % 范围内光照强度精确控制

- 可以秒、小时、天的跨度设置参数

- 用户自编程功能（可选）

- 极小的发热量

lLED光源光强远远高于传统灯管，暖白光可达500 µmol(photon)/m².s的；冷白光可达1,000 µmol(photon)/m².s

l用户自编程：允许设置程序对温度、光照、振荡速度和相对湿度（可选）进行自动调控

技术参数：

AG130藻类生长室：

l温控范围：
+15 ºC to +50 ºC (ZD照明)
+10 ºC to +55 ºC (ZD照明) – 可选，温控升级

lLED光源：25 × 35 cm，白光+远红光LED

lZD光强：
500 µmol(photon)/m².s 暖白光
1,000 µmol(photon)/m².s 冷白光

l定制光源，如RGB光源、红蓝光源或其它

l用户自编程：允许设置程序对温度、光照、振荡速度和相对湿度（可选）进行自动调控

l外部尺寸：100 × 55 × 62 cm (H × W × D)

l内部尺寸：69 × 42 × 40 cm (H × W × D)

l内部容积：124 L

l培养面积：0.14m²

l重量：55 kg

l制冷剂：R134a

l压缩机：220 - 240 V; 50 Hz; 160 W ; 0.70 A

l功耗：500 W

AG230藻类生长室：

l控温范围：

+15 ºC to +45 ºC(振荡器开，ZD照明)

+10 ºC to +55 ºC (振荡器开，ZD照明)– 可选，温控升级

lLED光源： 白光+远红光LED，其他光源可定制

-上光源：25 × 35 cm

-两个下光源：33 × 46 cm

lZD光强：

-上光源：500µmol(photon)/m².s，可升级1000µmol(photon)/m².s（冷/暖白光）或1500µmol(photon)/m².s（冷白光）

-下光源：350µmol(photon)/m².s

l外部尺寸：170 × 60 × 62 cm (H × W × D)

l内部体积：265 L

l培养面积：0.53m²

l用户自编程：允许设置程序对温度、光照、振荡速度进行自动调控

l重量：70 kg

l制冷剂：R600a

l压缩机：220 - 240 V;50 Hz; 200 W; 1 A

l输入功率：600 W/900 W

可选功能：

l回转振荡器（可选）

l高精度气体混合系统（可选）：可控制多4种生长箱中的气体浓度与流速，标配版可控制空气/氮气和CO₂，气源需用户自备

l集成叶绿素荧光测量（可选）

l用户自定义编程控制（可选）：用户可自定义光强及持续时间，设置多达224种光照的阶段性变化，模拟昼夜周期变化、日升日落等自然界中光环境变化以及其他各种任意变化

lDaylight程序升级（可选）：模拟多云天气

振荡器（选配）：

l高耐磨损材料

l尺寸：375 × 320 × 125 mm

l平台尺寸：290 × 258 mm

l重量：8kg

l装载能力：5kg (14个50ml锥形瓶 / 9个100ml锥形瓶 / 5个250 ml 锥形瓶 / 4个500ml锥形瓶 / 2个1000ml锥形瓶)

l振荡速度：30 - 500 RPM，可进行数字设定

l定时或持续运转模式

l自动过热保护

l工作环境：0-50 ºC，80%RH

l配有防滑橡胶垫

l功率：50W

产地：捷克

参考文献：

1.Singh V, et al. 2019, Phytotoxicity and degradation of antibiotic ofloxacin in duckweed (Spirodela polyrhiza) system. Ecotoxicology and Environmental Safety 179: 88-95

2.Fakhimi N, et al. 2019, Acetic acid is key for synergetic hydrogen production in Chlamydomonas-bacteria co-cultures. Bioresource Technology 289: 121648

3.Kumar A, et al. 2019, Organic radical imaging in plants: Focus on protein radicals. Free Radical Biology and Medicine 130: 568-575

4.Fakhimi N, et al. 2019, Acetic acid uptake rate controls H2 production in Chlamydomonas-bacteria co-cultures. Algal Research 42: 101605

5.Ferro L, et al. 2018, Subarctic microalgal strains treat wastewater and produce biomass at low temperature and short photoperiod. Algal Research 35: 160-167

6.Yunus IS, et al. 2018, Photosynthesis-dependent biosynthesis of medium chain-length fatty acids and alcohols. Metabolic Engineering 49: 59-68

7.Vuorijoki L, et al. 2017, Inactivation of iron-sulfur cluster biogenesis regulator SufR in Synechocystis sp. PCC 6803 induces unique iron-dependent protein-level responses. Biochimica et Biophysica Acta 1861(5): 1085-1098

8.Vuorijoki L, et al. 2017, SRM dataset of the proteome of inactivated iron-sulfur cluster biogenesis regulator SufR in Synechocystis sp. PCC 6803. Data in Brief 11: 572-575

9.Stemmler K, et al. 2016, Growth and fatty acid characterization of microalgae isolated from municipal wastetreatment systems and the potential role of algal-associated bacteria in feedstock production. PeerJ 4:e1780; DOI 10.7717/peerj.1780

10.Zavřel T, et al. 2016, A quantitative evaluation of ethylene production in the recombinant cyanobacterium Synechocystis sp. PCC 6803 harboring the ethylene-forming enzyme by membrane inlet mass spectrometry. Bioresource Technology 202: 142-151

11.Zhang B, et al. 2016, Sustainable Production of Algal Biomass and Biofuels Using Swine Wastewater in North Carolina, US. Sustainability 8(5): 477

12.Amini H, et al. 2016, Numerical and experimental investigation of hydrodynamics and light transfer in open raceway ponds at various algal cell concentrations and medium depths. Chemical Engineering Science 156: 11-23