kegg分析 是全部差异表达基因 还是上调基因

基因注释和差异表达基因方法
一、实验流程

提取样品总RNA后，用带有Oligo（dT）的磁珠富集真核生物mRNA（若为原核生物，则用试剂盒去除rRNA后进入下一步）。加入fragmentation buffer将mRNA打断成短片段，以mRNA为模板，用六碱基随机引物（random hexamers）合成diyi条cDNA链，然后加入缓冲液、dNTPs、RNase H和DNA polymerase I合成第二条cDNA链，在经过QiaQuick PCR试剂盒纯化并加EB缓冲液洗脱之后做末端修复、加A并连接测序接头，然后用琼脂糖凝胶电泳进行片段大小选择，Z后进行PCR扩增，建好的测序文库用Illumina HiSeq? 2000进行测序。

二、信息分析流程

1、产量统计

原始序列数据

测序得到的原始图像数据经base calling转化为序列数据，我们称之为raw data或raw reads，结果以fastq文件格式存储，fastq文件为用户得到的Z原始文件，里面存储reads的序列以及reads的测序质量。在fastq格式文件中每个read由四行描述：

\@FC61FL8AAXX:1:17:1012:19200#GCCAAT/1

CCACTGTCATGTGAACATCACAGAGACATTTCTTGA

+

bbbbbbbbbbbbbbbbbbbbbbbbbaaaaaaaaa_\\

每个序列共有4行，第1行和第3行是序列名称（有的fq文件为了节省存储空间会省略第三行“＋”后面的序列名称），由测序仪产生；第2行是序列；第4行是序列的测序质量，每个字符对应第2行每个碱基，第四行每个字符对应的ASCII值减去64，即为该碱基的测序质量值，比如c对应的ASCII值为99，那么其对应的碱基质量值是35。从Illumina GAPipeline v1.3开始（目前为v1.6），碱基质量值范围为2到41。表1为测序错误率与测序质量值简明对应关系。具体地，如果测序错误率用E表示，碱基质量值用sQ表示，则有下列关系：

file:///F:/G??/????????????/genetics_result_byhuada/bia120306/ihelp_right.html

1/17

12-10-11Help Document

sQ = -10lgE

表1 测序错误率与测序质量值简明对应关系

测序质量值

13

20

30测序错误率5%1%0.1%对应字符MT^

数据过滤

测序得到的reads，并不都是有效的。里面含有带接头的，重复的，测序质量很低的reads，这些reads会影响组装和后续分析，我们对下机的reads过滤，得到clean reads。数据处理的步骤：

1. 去除含adaptor的reads

2. 去除N的比例大于5%的reads

3. 去除低质量reads（质量值Q≤10的碱基数占整个read的20%以上）

4. 获得Clean reads

Clean Reads数据

原始序列数据经过去除杂质后得到的数据。后续分析都基于Clean reads。

表2 测序产量统计表格示例

SamplesTotal Raw ReadsTotal Clean ReadsTotal Clean Nucleotides (nt)Average Read Length (nt)Q20 percentageN percentageGC percentageSample_A63，490，65454，821，1384，933，902，42090+9096.25%0.00%53.69%

* Total Clean Nucleotides = Total Clean Reads1 x Read1 size + Total Clean Reads2 x Read2 size。

Total Raw Reads和Total Clean Reads分别表示原始reads和clean reads的总数量；Total Clean Nucleotides表示clean reads总的碱基数；Average Read Length表示clean reads的平均长度；Q20 percentage表示过滤后质量不低于20的碱基的比例。