测DNA含量绘标准曲线时，怎么算DNA的浓度

测DNA含量绘标准曲线时，算DNA的浓度的方法：先把标准品的浓度和每个标准品的吸光度用Excel生成标准曲线，同时得到公式。测量每个样本的吸光度。把吸光度代入公式，计算出对应的浓度.如果样本有稀释，还要乘以稀释倍数。DNA及RNA含量测定方法：取5ulDNA样品或4ulRNA样品加水到lml。 用lml水做空白。把样品杯放在分光光度计比色槽上。 每ul中DNA或RNA浓度(ug)将是OD值的10倍，例如稀释后样品在260nm处OD值为0.2，则原DNA或RNA样品浓度为2ug／ul。 如果想要检测样品的纯度，那么还要再测一次280nm处OD值，计算二者的比率，若比率接近2，则说明样品中核酸比较纯。若比率小于1.6，则说明蛋白或其它吸收此波长的杂质在其中，建议再用酚／氯仿抽提继以乙醇沉淀以除去杂质。 如果想检测样品中是否残存酚等有机杂质，那么还要测定一次230nm处OD值。 

之前做实验，朋友介绍了一款AAT Bioquest 的DNA浓度计算器，用着很方便 ，推荐给你
DNA浓度计算器 介绍：通过分子量、消光系数、和λmax带入Beer-Lambert定律的派生形式，可以确定溶液中DNA的浓度。物质的入max是其经历Z强吸光度时的波长。对于DNA，这个波长是260nm。 Nucleotide:核苷酸。可以选三种，dsDNA（单链DNA）、ssDNA（双链DNA）、自定义Dilution factor (optional)：稀释倍数Pathlength：路径长度 注意：DNA应该溶解在溶液中，DNA沉淀将导致浓度计算不准确。吸光度读数不应超过仪器的Z大检测限。这可以通过吸收光谱中的平台来确定。如果吸收光谱平稳，稀释样品可以再尝试一次。该计算器设定仪器的光程长度为1cm。用于分光光度计的标准比色皿（通常为1cm）。如果使用不同路径长度，则应在数据输入过程中更正数值。 使用说明：选择核苷酸或选择自定义序列进入核苷酸序列在λmax处输入吸光度。对于典型的核苷酸，λmax是260nm，但这个值可能会根据核苷酸而改变。请使用分光光度计读数所示的Z大吸光度（即Z高峰）如果用稀释样品获得吸光度，请输入稀释因子以确定原始样品浓度如果路径长度与1cm不同，请将更正后的数值输入λ光程文本框按“计算”显示浓度 https://www.aatbio.com/tools/calculate-DNADNA浓度计算器   介绍：通过分子量、消光系数、和λmax带入Beer-Lambert定律的派生形式，可以确定溶液中DNA的浓度。物质的入max是其经历Z强吸光度时的波长。对于DNA，这个波长是260nm。 Nucleotide:核苷酸。可以选三种，dsDNA（单链DNA）、ssDNA（双链DNA）、自定义Dilution factor (optional)：稀释倍数Pathlength：路径长度   注意：DNA应该溶解在溶液中，DNA沉淀将导致浓度计算不准确。吸光度读数不应超过仪器的Z大检测限。这可以通过吸收光谱中的平台来确定。如果吸收光谱平稳，稀释样品可以再尝试一次。该计算器设定仪器的光程长度为1cm。用于分光光度计的标准比色皿（通常为1cm）。如果使用不同路径长度，则应在数据输入过程中更正数值。 使用说明：选择核苷酸或选择自定义序列进入核苷酸序列在λmax处输入吸光度。对于典型的核苷酸，λmax是260nm，但这个值可能会根据核苷酸而改变。请使用分光光度计读数所示的Z大吸光度（即Z高峰）如果用稀释样品获得吸光度，请输入稀释因子以确定原始样品浓度如果路径长度与1cm不同，请将更正后的数值输入λ光程文本框按“计算”显示浓度