一、涂片前准备工作及涂片方法
1、涂片前准备工作
(1)保证标本新鲜,取材后尽快制片。
(2)涂片操作要轻巧,避免挤压以防止损伤细胞。涂片要均匀,厚薄要适度,太厚细胞堆叠,太薄细胞过少,均影响诊断。
(3)玻片要清洁无油渍,先用硫酸洗涤液浸泡冲洗,再用75%乙酸浸泡。
(4)含蛋白质的标本可直接涂片,缺乏蛋白质的标本,涂片前先在玻片上涂薄层粘附剂,以防止染色时细胞脱落,常用粘附剂为蛋白甘油,由等量生鸡蛋蛋白和甘油混合而成。
(5)每位患者的标本至少涂两张玻片,以避免漏诊。涂片后立即在玻片一端标上编号。
2、涂片制备方法
(1)推片法:用于稀薄的标本,如:血液、胸、腹水等。取离心后标本一小滴滴在玻片偏右侧端,推片用30度夹角将玻片上检液轻轻向左推。
(2)涂抹法:适用于稍稠的检液,如:鼻咽部标本。用竹棉签在玻片上涂布,由玻片ZX经顺时针方向外转圈匀抹;或从玻片一端开始平行涂抹,涂抹要均匀,不宜重复。
(3)压拉涂片法:将标本夹于横竖交叉的两张玻片之间,然后移动两张玻片,使之重叠,再边压边拉,获得两张涂片。该法适用于较粘稠标本,如:痰液。
(4)吸管推片法:用滴管将标本滴在玻片一端,然后将滴管前端平行置于标本滴上,平行向另一端均速移动滴管即可推出均匀薄膜。此法亦适用于胸、腹水标本。
(5)喷射法:用配细针头的注射器将标本从左至右反复均匀地喷射在玻片上,此法适用于各种吸取的液体标本。
(6)印片法:将切取的病变组织用手术刀切开,立即将切面平放在玻片上,轻轻按印。此方法为活体组织检查的辅助方法。
二、涂片的固定
固定(fication)的目的是保持细胞自然形态,防止细胞自溶和细菌所致的腐败;固定液能沉淀和凝固细胞内蛋白质和破坏细胞内溶酶体酶,使细胞不但保持自然形态,而且结构清晰,易于着色。因此标本愈新鲜,固定愈及时,细胞结构愈清晰,染色效果愈好。
1、固定液:细胞学检查常用的固定液有下列三种:diyi种酒清固定液:该固定液渗透明性较强,固定效果好,适用于一般细胞学常规染色;第二种是氯仿酒精固定液:又称卡诺氏固定液。其优点同上;第三种是95%酒精固定液,适用于大规模普查。制备简单,但渗透作用稍差。
2、固定方法
(1)带湿固定:涂片后未待标本干燥即行固定的方法称带湿固定。此法固定细胞结构清楚,染色新鲜。适用于巴氏或HE染色。痰液、阴道分泌物及食管拉网涂片等常用此方法。
(2)干燥固定:涂片后待其自然干燥,再行固定。适用于稀薄标本如尿液、胃冲洗液等,也适用于瑞特染色和姬姆萨染色。
3、固定时间:一般为15-30min。含粘液较多标本,如痰液、阴道分泌物、食管拉网等固定时间应适当延长;尿液、胸、腹水等涂片不含粘液,固定时间可酌情缩短。
三、涂片的染色
1、染色的目的和原理:染色的目的是借助于一种或多种染料,使组织和细胞内结构分别着不同的染色,这样在显微镜下能清楚地观察细胞内部结构,作出正确判断。
组织细胞染色原理至今尚无满意的解释,可能是物理作用,也可能是化学作用,或者是两者综合作用的结果。
染色的物理作用是利用毛细管现象,渗透、吸收和吸附作用,使染料的色素颗粒牢固地进入组织细胞,并使其显色;染色的化学作用是渗入组织细胞的染料与其相应的物质起化学反应,产生有色的化合物。
各染料都具有两种性质,即:产生颜色;征收被组织形成亲和力。这两种性质主要由发色基因和助色基因所产生。发色基团:苯的衍生物具有可见光区吸收带。这些衍生物显不出吸收带与其价键的不稳定性有关,如对苯二酚为无色,当其氧化后失去两个氢原子,它的分子或则变为有黄色的对醌,这种产生颜色的醌式环称为发色基团。若一种化合物含有几个环,只要其中有一个醌式环就会发出颜色,称此发色基团为色原(chromogen)。助色基团:是一种能使化合物以生电离作用的辅助原子团(酸碱性基团)。它能使染色的色泽进一步加深,并使其与被染色组织具有亲和力。
助色基团的性质决定染料是酸性碱性。碱性染料具有碱性助色基团,在溶媒中产生的带色部分为带正电荷的阳离子,吻与组织细胞内带负电荷的物质结合而显色。如细胞核内的主要化学成分脱氧化核糖核酸易被苏木素染成紫蓝色,称嗜碱性。酸性染料具有酸性用力色基团,在溶酶中产生带色部分为阴离子,易与组织细胞内带正电荷部分结合而显色,此性质被称为嗜酸性,如细胞浆内订成分为蛋白质,易与伊红或橘黄结合呈红色或橘黄色。
2、常用染色方法:临床日常工作中较为常用的染色方法有下列3种:
(1)巴氏染色法:本法染色特点是细胞具有多色性颜色,色彩鲜艳多彩。涂片染色的透明性好,胞质颗粒分明,胞核结构清晰,如鳞状上皮过度角化,细胞质呈橘黄色;角化细胞显粉红色;而角化前细胞显浅绿色或浅蓝色,适用于上皮细胞染色或观察阴道涂片中激素水平对上皮细胞的影响。此方法的缺点是染色程序比较复杂。
(2)苏木精—伊红(he